Клиническая паразитология собак и кошек - часть 3

растительным маслом, переносят на предметное стекло и исследуют таким же
образом, как указано в пункте 1.

4. Исследование корня волос (трихограмма)

Микроскопическим исследованием волос, вырванных с мест кожных

поражений   можно   обнаружить   наличие   возбудителей   из   рода  Demodex  (в
области   волосяной   луковицы),   яйца   хейлетиел   и   гнид   вшей.   Необходимым
считается   исследование   волос   в   тех   местах,   которые   труднодоступны   для
получения кожного соскоба, например, между пальцев и т. п.

5. Исследование с использованием прозрачной липкой ленты

Прозрачную липкую ленту используют для захвата быстро двигающихся

паразитов,   которых   трудно   поймать   выше   перечисленными   методами.   В
местах кожных изменений, на чешуйках и других образованиях состригают
волосы,   накладывают   ленту   и   несколько   раз   прижимают   к   коже.   Потом
снятую с кожи ленту приклеивают на предметное стекло и микроскопируют
при малом увеличении. Этим методом прежде всего можно захватить блох,
хейлетиел, вшей, яйца, гнид и другие стадии развития накожных паразитов. Из
других   паразитов   можно   также   обнаружить  Otodectes   cynotis,  Trombicula
autumnalis, Dermanyssus galinae, и других клещей.

6. Другие методы исследования

Кроме выше приведённых способов существует целый ряд других методов

и   их   модификаций,   направленных   также   на   доказательство   наличия
эктопаразитов.   К   ним   также   относится  исследование   с   помощью   густой
щётки  и   концентрационнный   метод   с  использованием  минипылесоса.
Общим   принципом   этих   двух   методов   является   стремление   собрать
наибольшее   количество   органического   материала   с   поверхности   кожи
исследуемого   животного.   Последующим   микроскопическим   исследованием
увеличивается   вероятность   обнаружения   и   единичных   паразитов   или   их
признаков.   Если   полученный   материал   перенести   на   влажную
фильтровальную бумагу или смоченное белое полотно, то можно обнаружить
блошиный помёт с красными крапинами непереваренной крови.

1.2.1.3. Исследование крови и костного мозга

Исследование паразитов крови в наших условиях проводятся не так часто.

Этот метод используют не только для диагностики экстра- и интрацелулярных

паразитов крови (бабезий, лейшманий, трипаносом) при подозрении на
заболевание, а также в профилактических целях при импорте животных или
при возвращении с мест распространения этих паразитов.

Кровь берут натощак, то есть после 12-часовой голодной диеты из v.

cephalica antebrachii, v. saphena или v. jugularis.

Костный мозг берут при помощи специальной биопсической иглы обычно

из  грудной   кости    или  подвздошного   бугра.   Место   биопсии   локально
анестезируют   подкожным  введением 1%-го Мезокаина.  Биопсическую  иглу
вводят   под   углом   примерно   45°  к   телу   (в   подвздошный   бугор),   вынимают
мандрен и инъекционным шприцом создают вакуум. Из полученного пунктата
готовят   мазок,   который   высушивают   при   комнатной   температуре.
Микроскопически исследуют нативный препарат либо окрашенный одним из
методов.

1. Нативный препарат

Каплю свежевзятой крови размешивают в физиологическом растворе

лучше всего на часовом стёклышке до достижения светло-розовой окраски
раствора и рассматривают при среднем увеличении микроскопа. Этот метод
лучше всего подходит для исследования живых трипаносом, которых можно
обнаружить благодаря их активному движению.

2. Окраска мазка крови по Гимзе

Мазок крови сушат на воздухе и фиксируют метанолом в течение 5

минут. Коммерческую концентрированную краску Романовского-Гимзе перед
каждой окраской необходимо разводить заново. К 100 мл дистиллированной
воды добавляют либо 4 – 5 мл (получим менее концентрированный раствор),
либо   10   мл   краски   (более   концентрированный   вариант),   либо   1   –   2   капли
концентрированной   краски   к   1   мл   дистиллированной   воды.   Дают   стечь
раствору   с   фиксированных   образцов,   после   чего   красят   ещё   раз   менее
концентрированной краской 45 минут и в более концентрированном 30 минут.
Тщательно   промывают   водопроводной   водой   и   снова   сушат.   В   процессе
окраски   рекомендуется   систематически   осматривать   мазки   и,   не   обращая
внимания на точное соблюдение временных интервалов исследовать образцы
при оптимальной интенсивности окраски.

3. Окраска мазков крови и костного мозга паноптическим методом

Приготавливают несколько мазков крови, а смотря по обстоятельствам,

мазков из измельчённого костного мозга на чистых и тщательно
обезжиренных предметных стёклах. Чем больше количество взятых образцов,
тем выше вероятность обнаружения паразитов. Высушивают мазки на

воздухе. На стеклянную решётку, помещённую в фоточашку, кладут мазки,
готовые   к   окрашиванию   и   заливают  раствором   Мей-Грюнвальда   (May-
Grúnwald).  Через   3   минуты   на   образцы   капают   примерно   по   10   капель
дистиллированной воды и перемешивают движением  стекла. Для получения
эффекта   оставляют   примерно   на   1   минуту.   После   этого   окрашивают
свежеприготовленным раствором красителем Романовского-Гимзе, который
готовят добавлением 10 капель, (то есть 0,5 мл) концентрированной краски к
10 мл буферного раствора. Через 10 минут краску сливают и споласкивают
мазок  водой,   вытирают  нижнюю  сторону   мазка   и  высушивают  на  воздухе.
Исследуют при среднем увеличении, однако лучше с иммерсией. При оценке
результатов окрашивания и постановки диагноза следует консультироваться и
сравнивать   результаты   со   специализированными   лабораториями.   Ложно
поставленный   диагноз   (например,   лейшманиоз,   бабезиоз)   может   вести   за
собой ненужное и дорогое лечение.

1.2.1.4. Исследование мышечной ткани компрессионным методом

Посмертный метод исследования, который используется, прежде всего,

при диагностике трихинеллёза и проводится обязательно у домашних свиней
на  бойнях   и  у  диких  кабанов.  Исследование  собак   и  кошек  рекомендуется
проводить  в   случае  гибели   при  подозрении  на  трихинеллёз.  У  плотоядных
наиболее   распространёнными   местами   локализации  Trichinella  spiralis
являются   язык   и   мышечная   ткань   грудных   конечностей.   Однако   для
исследования наиболее подходит мышечная ткань диафрагмы, которая легче
сжимается. Из каждой части диафрагмы отбирают образец и для повышения
вероятности обнаружения мышечных цист нарезают 2 х 14 образцов размером
с овсяное зерно, которые помещают в отдельные луночки компрессориума.
Закручивают гайки до тех пор, пока мышечная ткань не станет прозрачной.
Если не имеется компрессориума, можно образцы мышечной ткани поместить
между двумя предметными стёклами и сильно сжать. Исследования проводят
под малым увеличением микроскопа.

1.2.2. Специальные методы

Специальные методы диагностики направлены на дифференциацию

паразитов родственной группы. Эти методы дополняют исследования
основными методами.

Проведение специальных диагностических методов требует чаще всего

более качественного оснащения лаборатории. Кроме того, необходимость их
применения не очень частая. Прежде всего, речь идёт о классическом методе
обнаружения  уровня   специфических   антител.   Кроме   того,   коммерческие
диагностикумы   позволяют   быстрое   подтверждение   диагноза   без
использования   сложного   оборудования,   поскольку   реакции   основаны   на
обнаружении   антигенов   биохимически,   и   их   считывают   при   выраженной
смене   цвета.   Есть   ещё  дифференциальные   методы   диагностики
окрашенных мазков. Они не настолько сложны, и в определённых случаях их
можно использовать.  Их использование  часто   необходимо, прежде  всего,  в
протозоологии, и то, прежде всего при малых размерах и неяркой морфологии
исследуемых структур. Однако для таких методов необходим качественный
микроскоп с иммерсионным объективом, позволяющим увеличение в 100 раз.

1. Cryptosporidium spp.

Ооцисты очень неспецифические, поэтому для повышения

дифференцировки   удобно   накрыть   нативный   препарат   покровным   стеклом.
Рассматривают   при   среднем   увеличении   с   использованием   иммерсии.
Дифференциальной   диагностикой   необходимо   отличать   ооцисты   от
дрожжевых грибов, от которых они отличаются плотной гладкой оболочкой и
4   выраженными   спорозоитами.   Положительные   образцы   проверяют
дифференциальной окраской. Красят мазок из кала посмертно, например, из
соскоба слизистой тонкого кишечника.

С этой целью используют метод Гейне. После исследования нативного

препарата добавляют к подсохшему, но ещё влажному образцу, каплю
карболфусцина и перемешивают иголкой. При достижении мутного вида на
ещё влажный мазок наносят каплю иммерсионного масла и исследуют.
Ооцисты криптоспоридий не окрашиваются и опалесцируют светлым цветом
на тёмном фоне.

2. Trichomonas spp.

Ватным тампоном, смоченным в воде, тщательно протирают полость рта и

десны   вокруг   зубов.   Затем   чистое   и   обезжиренное   предметное   стекло
протирают   этим   тампоном   и   отжимают   из   него   избыток   жидкости.   Этот
нативный   препарат   сразу   же   исследуют   под   микроскопом   при   среднем
увеличении   для   обнаружения   паразитов,   которых   видно   благодаря   их
движению.   Препарат   не   должен   засыхать.   Для   изготовления   постоянного
препарата   можно   использовать   обычную   окраску   по   Гимзе,   описанную   в
исследовании   кровяных   мазков   (см.   главу   1.2.1.3.).   Трихомонады
окрашиваются в голубой цвет.

При использовании специальной окраски трихомонад достигают лучшего

эффекта и более точного различения отдельных структур. Трихомонады также
окрашиваются в голубой цвет с типичным узким овальным карминным ядром,
расположенным эксцентрически. Размер трихомонад сильно колеблется.

Образец из ротовой полости растирают на предметном стекле и дают

высохнуть. Наливают раствор Люголя, и через несколько секунд смывают
метиловым спиртом и дают высохнуть ещё раз. Красят раствором Гимзы в
течение 1 часа.

Специально для этого метода всегда готовят свежий раствор Гимзы

смешиванием 1 части концентрированной краски Романовского-Гимзе (25 мл)
и 3 частей буферного раствора (75 мл). Этот специальный буферный раствор
можно приготовить в аптеке смешиванием 0,25 г KH

и 1,7 г Na

HPO

•

O и растворением в 1 литре дистиллированной воды. В конце образец

споласкивают водой и дают высохнуть.

3. Giardia intestinalis

При посмертной диагностике с подозрением на острый лямблиоз можно

исследовать   соскоб   со   слизистой   оболочки   кишечника.   Проводят   его
непосредственно на предметном стекле, соскоб растирают и капают на него
немножко воды. В случае если соскоб совершенно свежий, наблюдают живо
передвигающиеся   лямблии.   Если   соскоб   уже   пролежал   несколько   часов,
необходимо   приготовить   окрашенный   препарат.   В   более   старых   пробах,
лямблии   обнаружить   уже   невозможно.   Литические   посмертные   процессы
относительно   быстро   разрушают   лямблий   в   кишечнике,   что   делает
диагностику невозможной.

При окраске соскоба со слизистой кишечника действуют так же, как и при

окраске образца из ротовой полости, однако рекомендуется при специальном
методе время окраски раствором Гимзы продлить на 1,5 часа.

4. Trypanosoma spp.

Метод толстой капли используют, если предполагают, в крови слабую

интенсивность инвазии и имеется риск не обнаружить паразитов в кровяном
мазке. На предметное стекло помещают 1 – 2 капли крови. При помощи иглы
или углом другого стекла осторожно перемешивают и доводят до диаметра
примерно 1 см. Дают хорошо высохнуть. На образец наносят толстый слой
раствора   Гимзы,   приготовленного   в   отношении   1:10   (смотри   1.2.1.3.),   и
оставляют на 20 – 30 минут. После этого осторожно ополаскивают водой в
большой ёмкости, а не под струёй, чтобы капля не смылась. После высыхания
просматривают   под   иммерсией.   Поскольку   образец  не   фиксируют,
окрашивание   ведёт   к   гемолизу   эритроцитов,   от   которых   останутся   лишь
нечёткие   очертания.   Поэтому   препарат   весьма   легко   просмотреть   на   всю

глубину. Слои засохшей крови выше, чем при обычном кровяном мазке, и
поэтому паразитов найти легче.

1.3 О

СНОВЫ

ЛЕЧЕНИЯ

ПРОФИЛАКТИКИ

Лечению паразитарных заболеваний в идеальном варианте должна

предшествовать точная диагностика и определение вида паразита. Однако,
в некоторых (определённых) случаях, самым типичным из которых является
проблема аскарид у молодых плотоядных, предпочтительна профилактическая
дегельминтизация,   без   диагностики,   поскольку   вероятность   их   заражения
исключительно   высока.   С   другой   стороны,   у   взрослых   собак
профилактическая   дегельминтизация   чаще   всего   не   нужна   и   является
обоснованной только при положительном диагностическом исследовании. Это
правило   касается   и   цестод.   В   принципе   можно   посоветовать
профилактическое исследование кала у животных до 2 лет 1 раз в 3 месяца, у
более   старших   животных   достаточно   исследовать   кал   1   раз   в   полгода.
Проблематика   протозойных   инвазий   и   их   лечение   в   большинстве   случаев
настолько сложна, что ей должна предшествовать тщательная диагностика и
специфическое лечение.

При лечении необходимо следить за недопущением образования

резистентных   форм   паразита.   Главный   принцип   –   это  давать   полную
терапевтическую дозу лекарств. Резистентность возникает именно при даче
так   называемых   «профилактических   доз»,   которые   ошибочно   считаются
меньше   терапевтических.   Они   не   ликвидируют   паразита,   у   него
вырабатывается   система   защиты   от   антгельминтика   передающаяся
последующим поколениям. Таким образом, возникают резистентные формы
паразитов,   с   которыми   трудно   справиться   только   терапевтически.   Поэтому
при   регулярной   профилактической   дегельминтизации   всегда   используют
терапевтическую дозу, рассчитанную в соответствии с массой животного.

Вместе с этим на рынке имеется большой выбор современных

антипаразитарных средств. Появлению резистентности таким образом можно
препятствовать чередованием препаратов против определённых паразитов
таким образом, чтобы не возникла устойчивость к определённым компонентам
антипаразитарного препарата.

Ниже, приводится краткий перечень наиболее часто употребляемых

антипаразитарных препаратов, сгруппированных в соответствии с
действующими, началом. Перечень далеко не полный и это не является целью
данного издания. Алфавитный перечень препаратов в соответствии с
фирменными названиями и дозировкой приводится в таблице в конце данной
монографии.

1.3.1. Препараты с преимущественным воздействием на внутренних
паразитов.

1. Пиперазин

Препараты на основе пиперазина принадлежат к наиболее старым

антгельминтикам и используются, прежде всего, против аскарид (например,
Helmirazin, Vermidog и т. п.), обладают антихолинергическим воздействием на
нервно-мышечный аппарат паразитов, вызывая их паралич. Из организма
паразиты выводятся при нормальной перистальтической деятельности
кишечника.

Еще недавно препараты пиперазина были, бесспорно, самыми часто

используемыми.   Однако   с   годами   эффективность   пиперазина   постепенно
понижается.   С   изначальных   100%,   эффективность   снизилась   почти   на
половину.   Этот   препарат   безопасный   для   щенков   и   котят,   хотя   слишком
большие   дозы   в   некоторых   случаях   вызывают   рвоту,   понос   и   мышечный
тремор. Имея ввиду то, что эффективность препаратов на основе пиперазина
снижается,  изначально   используемые   дозы  в  пределах   от  100  до  200  мг/кг
живой массы увеличились до 300 – 500 мг/кг. Антипаразитарный курс лечения
должен повторяться через 2 – 3 недели.

2. Бензимидазоловые препараты

Бензимидазоловые препараты представляют собой большую группу

современных   антгельминтиков   применяемых   у   собак,   а   также   у   кошек.
Механизм действия этих препаратов против нематод заключается в блокаде
(ингибиции)   полимеризации   структурного   белка   тубулина   к   микротубулам.
Таким   образом,   нарушается   транспортная   функция   абсорбтивных   клеток
паразита. Выявляются нарушения в поступлении и метаболизме глюкозы.

Все бензимидазоловые препараты проявляют низкую токсичность, однако

некоторые могут обладать тератогенным воздействием, и противопоказаны в
начальной фазе (первой трети беременности).

В отличие от жвачных и лошадей, для которых достаточно однократной

дачи   антипаразитарных   средств   бензимидазолового   ряда,   для   мелких
животных   необходимость   в   приёме   препаратов,   увеличивается,   по   крайней
мере, до 3 – 5 дней. Это обусловлено, вероятно, тем, что у мелких животных,
являющихся   моногастричными,   антипаразитарные   средства   выводятся   из
организма быстрее, а также они отличаются от крупных животных меньшим
объёмом   воды   в   пищеварительном   тракте,   а   в   связи   с   этим   наблюдается
меньшая   растворимость   и   использование   лекарственных   веществ.

Однократная дача, тем более не в максимальной дозе, не будет полностью
эффективна от желудочно-кишечных паразитов кошек и собак.

Фенбендазол (Panacur tbl, Coglazol tbl, Fenrymin susp ad us. vet. и т. п.)

оказывает очень хорошее действие на большинство круглых гельминтов у
собак. Его использование у кошек до сих пор не лицензировано. Доза 50 мг/кг
живой массы в течение 3 – 5 дней очень эффективно действует не только на
нематод пищеварительного тракта, но также и на некоторые виды трематод и
цестод мелких животных. Препарат является безопасным и в более высоких
дозах и не противопоказан во время беременности и лактации. Из-за широкого
спектра эффективности и общей безопасности можно использовать его также
для лечения менее распространённых паразитозов мелких домашних
животных, против которых не разработан стандартный способ лечения.

Фебантел (например, Rintal) является веществом пробензимидазолового

ряда,   которое   метаболизируется   в   фенбендазол.   Фебантел   в   принципе
единственное   вещество   бензимидазолового   ряда,   которое   производители
рекомендуют использовать у кошек. Препарат безопасен для кошек, но нельзя
его   использовать   во   время   беременности.   Кошки   переносят   его   хорошо,
обычно он выпускается в виде пасты. Фебантел даётся в дозе 10 – 15 мг/кг
живой массы  в  течение  3  дней. Часто  комбинируют с  препаратами  против
цестод,   например   с   празиквантелом   (Drontal,  Drontal  Plus  и   паста  Vercom).
Фебантел   оказывает   очень   хороший   результат   против   аскарид,   клещей,   а
также Trichuris vulpis.

Мебендазол (например, Telmin KH, Mebenvet) является следующим, часто

используемым   в   практике   мелких   животных   бензимидазоловым
антипаразитарным средством. Подобно фенбендазолу у него широкий спектр
действия   против   желудочно-кишечных   нематод.   Препарат   относительно
безопасный,   несмотря   на   то,   что   были   описаны   единичные   случаи
гепатотоксичности   при   его   использовании   у   собак.   По   этой   причине   не
рекомендуется   применять   его   у   животных,   страдающих   заболеваниями
печени.   Назначают   в   дозе   22   мг/кг   живой   массы   в   течение   трёх   дней.
Препараты, содержащие мебендазол токсичны для нутрий!

Из остальных бензимидазоловых препаратов в последние годы на рынке

появились   препараты   на   основе  альбендазола  (Aldifal,  Valbazen  и   др.),
оксфендазола,  оксибендазола  (Polyvercan  tbl.) и  флюбeндазола  (Flubenol  P.,
Flubenol  KH).   В   значительных   масштабах   они   используются   как
антипаразитарные средства у собак, их эффективность и безопасность у кошек
является предметом дальнейших исследований.

3. Пирантел

Пирантел (например, паста Banminth) принадлежит к антгельминтикам

тетрагидропиримидиновой группы. Это антогонист Н-холинорецепторов, он
возбуждает Н-рецепторы и вследствие этого наступает спастический паралич

содержание .. 1 2 3 4 ..